从第一次出现胰岛自身抗体到出现1型糖尿病临床症状的进展率在儿童时期就有很好的描述，多个胰岛自身抗体阳性的儿童中有70%在血清转换后10年内患上糖尿病，而随访15年的儿童这一比例增加到84%。相比之下，占临床1型糖尿病一半以上的成人型1型糖尿病的发病机制还没有得到充分的研究。

越来越多的人开始使用分期系统来定义1型糖尿病的进展：个体在出现多种胰岛自身抗体时进入第1阶段，出现血糖异常时进入第2阶段，出现症状时进入第3阶段。一些多发胰岛自身抗体阳性的个体，在1期和2期，进展较慢，并发展为成人发病的1型糖尿病。我们之前描述了一组在首次检测到多种胰岛自身抗体样本后至少10年无糖尿病的极慢进展者，这组患者人数少，但特征非常明确。随后，我们发现胰岛自身抗原特异性CD8+T细胞反应在进展缓慢的患者中基本不存在，但在近期发病和长期存在的糖尿病患者中很容易检测到。这可能表明，与进展患者相比，这些患者自身免疫反应的调节增强。

早期研究表明，尽管调节性T细胞(Treg)数量正常，但糖尿病患者存在一些功能缺陷，其中包括对IL-2的反应能力降低。此外，糖尿病患者中的效应CD4+T细胞可能对调节更具抵抗性，表现为效应T细胞的抑制减弱，自然产生的Treg和体外产生的诱导Treg，以及抗原经历的CD4+T细胞中IL-2反应减弱。本研究的目的是描述了CD4+调节性T细胞(Treg)在一小群极缓慢进展者中的特征，他们的平均年龄为43岁(31-72岁)，随访时间为18-32年。

方法：BOX研究是一项以人群为基础的纵向研究，在21岁以下确诊的患者亲属中检查1型糖尿病的危险因素。我们之前描述了长期缓慢进展者的特征，他们保持多重胰岛自身抗体阳性超过10年，但没有出现糖尿病的临床症状，慢性或非进行性自身免疫。随后，10名继续保持无糖尿病并愿意提供大量血液样本的缓慢进展者纳入T和B细胞功能分析。在目前的研究中，8名慢进展者(SP组)，中位年龄43岁(31-72岁)，18 - 32岁之间的胰岛自身抗体阳性。所有的参与者都处于1型糖尿病进展的1期，尽管一些人随后失去了胰岛自身抗体对某些抗原的阳性反应，然而，一名患者已经处于2期至少6年，但没有出现临床症状，一名患者被诊断为糖尿病，该受试者72岁，在采集实验样本时，其HbA1c升高到53 mmol/mol(7%)，在数据分析中对该供体进行了单独评估。分离外周血单个核细胞(PBMCs)，采用多参数流式细胞术和T细胞抑制试验评估供体中Treg的频率、表型和功能。使用FlowSOM和CITRUS(聚类鉴定、表征和回归)进行无监督聚类分析，评估Treg表型。

结果：与健康供体相比，来自慢进展体的记忆CD4+T细胞的监督聚类显示，激活的记忆CD4+ Treg频率增加，与糖皮质激素诱导的TNFR相关蛋白(GITR)表达增加有关。一名HbA1c升高的患者与进展缓慢者和匹配的对照组相比，Treg谱有所不同。功能分析表明，与健康供体相比，来自缓慢进展体的Treg介导的CD4+效应T细胞抑制明显受损。表现为对效应CD4+T细胞CD25和CD134表达的抑制增加。

图1 深入的表型分析显示，CD4+Treg亚型在慢进展队列中增加。由FlowSOM生成的Treg室，聚集在来自所有供体的活CD4+CD45RA -细胞上。根据标记物表达鉴定出10个元簇:记忆T细胞_1;记忆T cell_2;记忆T cell_3;记忆T cell_4;CD49b记忆T细胞;HLA-DR + GITR +记忆T细胞;内存Treg_1;内存Treg_2;内存Treg_3;和内存Treg_4。(a)使用9个不同Treg标记生成的10个元簇的MST。每个节点代表一个集群(100个集群)，更大的元集群(10个元集群)在节点组周围上色。每个节点中的饼图表示单个标记的表达级别。(b)每个元聚类的热图，以显示整体标记表达。(c, d)为HD组(c)和SP组(d)生成图，以及FlowSOM识别的每个元簇的覆盖层。(e-l)相对丰度为每个metacluster箱线图(丰度> 0.05%)确定为HD和SP组:内存Treg_2 (e),内存Treg_3 (f),内存Treg_4 (g), HLA-DR + GITR +记忆T细胞(h)、记忆T cell_1(i),记忆T cell_2 (j),记忆T cell_3 (k) n d CD49b记忆T细胞(l)。橙色圆点代表捐赠者SP 606。**p< 0.01, Wilcoxon配对符号秩检验。此键适用于图形部分(a)， (c)， (d)和d (e-l)

图2 使用CITRUS的预测模型证实，Treg频率的增加是进展缓慢的标志。分级门控(a - f)和柑橘分析(g-k)比较SP参与者和匹配的HD参与者在CD4+CD45RA−T细胞上的差异。(a)亲本CD25+ cd127 lotreg和CD25loCD127+T c e l群体的代表性图。CD25+ cd127lotreg被CD39和FOXP3富集，然后通过HLA-DR和GITR表达进行分离，模拟FlowSOM群体。(b) HD(黑点)和SP(蓝点)组以及供体SP 606(橙色)中CD25+ cd127的频率汇总图。(c-f) CD25+CD127loCD39+FOXP3+和CD25loCD127+门控子集的箱线图;(c) HLA-DRloGITR−(内存Treg_2)， (d) HLA-DRintGITRlo(内存Treg_3)， (e) HLA- d RhiGITR+(内存Treg_4)， (f) HLA- d RhiGITR+(HLA-DR+GITR+内存T cell)。(g - i)柑桔簇螺旋由(g) CD127， (h) CD25和(i) FOXP3表达强度着色，箭头突出的簇被识别为SP和HD队列之间的不同。(j)箱线图显示了在SP(蓝点)和HD(灰点)组中，CITRUS记忆Treg_3和Treg_4的相对丰度(比例)。(k)直方图显示每个簇的表型(粉红色)和Treg标记相对表达与背景表达(蓝色);上列，内存Treg_3;下面一行，内存Treg_4。背景与所有其他簇中标记的表达有关。*p< 0.05， **p< 0.01, Wilcoxon配对符号秩检验

图3 与健康献血者相比，进展缓慢者记忆treg的GITR增加。每个记忆CD4+T细胞元簇(记忆T细胞_1;记忆T cell_2;记忆T cell_3;CD49b +记忆T细胞;HLA-DR + GITR +记忆T细胞;内存Treg_2;内存Treg_3;来自FlowSOM的memory Treg_4)检测每个表达标记的变化。(a,b)来自HD (a)和S (b)队列的表达热图(sp606不包括在内)。(c,d)记忆Treg_4元簇中所有HD(灰色)、所有SP(蓝色)和SP 606(橙色)的FlowSOM GITR表达串联，显示直方图(c)和汇总图(d)。Wilcoxon配对符号秩和检验，p< 0.07(橙色)所有供体包括，p< 0.05(蓝色)供体SP 606和匹配的HD不包括在测试中。(e,f) HLA-DRhiGITR+Tregs中GITR表达，从分级门控，从所有HD(灰色)、所有SP(蓝色)和SP 606(橙色)串联，显示直方图(e)和汇总图(f) *p< 0.05, Wilcoxon配对符号秩检验

图4 来自缓慢进展的CD4+ treg细胞控制效应CD4+T细胞的能力降低。SP组用蓝色的线和圆点表示，HD组用黑色的线和圆点表示，橙色的线/圆点表示供体sp606。使用CD4+CD25+ Treg分选试剂盒对CD4+T细胞进行分选。CD4+CD25−(应答者)被标记为CFSE, Treg按观察的比例滴定。用抗CD3 /28微珠活化细胞，培养3天后进行流式细胞术检测。(a-d)与CD4+应答者相对应的treg培养(自体)(e-h) HD、SP或SP 606 Treg与HD应答者培养。(a,b,f) CFSE增殖(a,e)和CFSE抑制百分比(b,f)。(c, d,h) CD25 (c,g)和CD134 (d,h)的抑制百分比。使用阳性对照(激活的响应细胞不含treg)计算抑制百分比。*p< 0.05， **p< 0.01， ***p< 0.001，重复测量双向方差分析。†p < 0.0 5 Bonferroni的事后多重比较测试

图5 效应CD4+T细胞对缓慢进展的T细胞活化的抑制更敏感。SP组用蓝色的线和圆点表示，HD组用黑色的线和圆点表示，橙色的线/圆点表示供体sp606。使用CD4+CD25+Treg分选试剂盒对CD4+T细胞进行分选。CD4+CD25−(应答者)被cfsel标记，treg按观察的比例滴定。用抗CD3 /28微珠活化细胞，培养3天后进行流式细胞术(CD25反染)和细胞因子分析。HD Treg与HD、SP或sp606应答者共同培养。(a,b) CFSE增殖(a)和CFSE抑制百分率(b)。(c,d) CD25抑制百分率(c)和CD134抑制百分率(d)。(e,f) IFN-γ(e)和IL-17A (f)在共培养中的表达。***p< 0.001， **p< 0.01，重复测量双向方差分析。†p < 0.0 5 Bonferroni的事后多重比较测试

结论：我们得出的结论是，来自缓慢进展子的活化记忆CD4+Treg在GITR表达中得到了扩展和丰富，强调了进一步研究Treg在1型糖尿病风险个体中的异质性的必要性。

原文出处：

 Boldison J,  Long AE,  Aitken RJ,et al.Activated but functionally impaired memory Tregs are expanded in slow progressors to type 1 diabetes.Diabetologia 2021 Oct 28